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激光共聚焦顯微鏡樣品制備方法之細胞樣品培養

返回列表 來源:本站 發布日期:2024-07-17 10:36:20【

激光共聚焦顯微鏡樣品制備方法中,針對細胞樣品的培養,主要涉及一系列精細的步驟,以確保樣品能夠適合在激光共聚焦顯微鏡下進行觀察。以下是一個詳細的制備過程:

一、細胞培養準備

材料選擇

載玻片與蓋玻片:選擇質量好、光潔、無雜質且厚度適宜的載玻片和蓋玻片。對于重要實驗,應提前檢查其光學特性,確保無熒光干擾。蓋玻片的厚度一般應小于0.17mm。

玻璃處理:新購買的蓋玻片需用玻璃洗液浸泡處理一天以上,再用去離子水沖洗掉殘存的洗液。之后進行高溫滅菌處理,并放置在細胞培養皿中備用。對于貼壁不牢的細胞或與細胞外基質相關的研究,玻璃片需預先包被細胞外基質,如poly-L-Lysine、Fibronectin、Laminin等。

顯微共聚焦系統.jpg

細胞培養

將處理好的蓋玻片放置在細胞培養皿中,并接種適量的細胞。細胞密度應根據實驗需求進行調整,通常在轉染前一天將細胞以一定比例(如1:4)鋪在含有蓋玻片的細胞培養皿中,以便細胞在D二天達到約50%的密度。

二、熒光表達載體的構建與導入

熒光表達載體的構建

構建綠色熒光融合蛋白(GFP)表達載體,將目的蛋白的cDNA通過PCR擴增后接入到熒光蛋白表達載體的多克隆位點。在設計熒光融合蛋白時,需考慮熒光蛋白的用途、種類以及插入位置(如N端、C端或定位信號序列之后)。

熒光表達載體的導入

將構建好的熒光表達載體進行大量擴增,并通過質粒抽提試劑盒純化,得到不含有內毒素的純化質粒。

將純化后的質粒導入到培養細胞中,常用的轉染方法包括磷酸鈣轉染法和脂質體介導的轉染法。轉染后繼續培養細胞1~2天,使GFP標記的蛋白表達水平達到能被熒光顯微鏡檢測的水平。

三、免疫熒光染色

細胞固定與通透

使用預冷的PBS緩沖溶液洗滌細胞,去除殘留的培養液。

加入4%多聚甲醛(PFA)固定液,在室溫下固定細胞15分鐘。

用PBS洗滌殘留的固定液后,用0.5% Triton X-100處理細胞5分鐘,以通透細胞膜,使抗體等大分子能進入細胞內部。

封閉與抗體孵育

在含有1% BSA的PBS溶液中孵育細胞30分鐘,以封閉細胞和玻璃片,減少抗體的非特異性吸附。

將一抗稀釋到含有1% BSA的PBS溶液中,孵育細胞1小時或4℃過夜。抗體的使用濃度應根據抗體的性質進行調整。

用含有1% BSA的PBS溶液洗滌細胞3次,每次5分鐘,以去除多余的抗體。

使用熒光標記的二抗或染料稀釋在含有1% BSA的PBS溶液中,室溫孵育1小時。注意避免強光照射,防止熒光基團淬滅。

洗滌與封片

用PBS洗滌玻璃片,去除殘留的熒光染料或抗體。

去掉玻璃片上多余的PBS,并用封片劑封片。待封片劑凝固后,即可進行激光共聚焦顯微鏡觀察。

四、注意事項

在整個制備過程中,需保持無菌操作,避免細胞污染。

注意控制實驗條件,如溫度、濕度和光照等,以確保實驗結果的準確性。

根據實驗需求選擇合適的熒光染料和抗體,以獲得Z佳的觀測效果。

通過以上步驟,可以制備出適合在激光共聚焦顯微鏡下進行觀察的細胞樣品。


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